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| <h1>Proof of Concept</h1> | | <h1>Proof of Concept</h1> |
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| + | Day 1 诱导培养 |
| + | 1. 取500 μL含抗生素的LB培养液,挑取平板上生长状态良好的克隆至其中,37℃摇动培养5~7 h至菌液浑浊; |
| + | 2. 取3 mL含抗生素的LB培养液,加入iPTG储液至终浓度为2 mM,加入上述菌液3 μL(1:1000稀释),37℃摇动培养过夜。 |
| + | Day 2 冻干 |
| + | 1. 观察对照组(GFP)是否产生荧光,观察到荧光后,方可继续进行实验; |
| + | 2. 使用分光光度计测定菌液OD600值,以OD600 = 1为109细胞,OD600在0.1~1之间,OD600值与细菌密度成线性关系,计算109个细胞所需取的菌液体积V = 100 / (OD600 × 稀释倍数) ; |
| + | 3. 取109细胞,8000 rpm离心3 min,尽弃上清; |
| + | 4. 使用预冷的100 μL 3%葡萄糖水溶液重悬菌体至15 mL摇菌管; |
| + | 5. 取下摇菌管盖,将样品放入冷阱,打开冻干仪的压缩机,冷冻2 h(期间冷阱温度低至-70℃); |
| + | 6. 将样品提起,打开真空泵和真空计,真空干燥6 h(期间真空度低至1 Pa); |
| + | 7. 关闭真空泵,盖紧管盖,室温放置2天。 |
| + | Day 4 存活率检测 |
| + | 1. 向上述摇菌管中加入1 mL无菌水,涡旋15 s,室温静置10 min; |
| + | 2. 弹匀,取100 μL菌液(含108细胞)涂板; |
| + | 3. 若以上密度不合适,则进行数次梯度稀释后再取100 μL涂板; |
| + | 4. 37℃倒置、静置培养过夜。 |
| + | Day 5 细胞计数 |
| + | 1. 取出平板,拍照记录实验结果; |
| + | 2. 使用Image J软件的细胞自动计数功能统计各平板菌落数,对比各组结果。 |
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Revision as of 05:51, 28 September 2020
Proof of Concept
Day 1 诱导培养
1. 取500 μL含抗生素的LB培养液,挑取平板上生长状态良好的克隆至其中,37℃摇动培养5~7 h至菌液浑浊;
2. 取3 mL含抗生素的LB培养液,加入iPTG储液至终浓度为2 mM,加入上述菌液3 μL(1:1000稀释),37℃摇动培养过夜。
Day 2 冻干
1. 观察对照组(GFP)是否产生荧光,观察到荧光后,方可继续进行实验;
2. 使用分光光度计测定菌液OD600值,以OD600 = 1为109细胞,OD600在0.1~1之间,OD600值与细菌密度成线性关系,计算109个细胞所需取的菌液体积V = 100 / (OD600 × 稀释倍数) ;
3. 取109细胞,8000 rpm离心3 min,尽弃上清;
4. 使用预冷的100 μL 3%葡萄糖水溶液重悬菌体至15 mL摇菌管;
5. 取下摇菌管盖,将样品放入冷阱,打开冻干仪的压缩机,冷冻2 h(期间冷阱温度低至-70℃);
6. 将样品提起,打开真空泵和真空计,真空干燥6 h(期间真空度低至1 Pa);
7. 关闭真空泵,盖紧管盖,室温放置2天。
Day 4 存活率检测
1. 向上述摇菌管中加入1 mL无菌水,涡旋15 s,室温静置10 min;
2. 弹匀,取100 μL菌液(含108细胞)涂板;
3. 若以上密度不合适,则进行数次梯度稀释后再取100 μL涂板;
4. 37℃倒置、静置培养过夜。
Day 5 细胞计数
1. 取出平板,拍照记录实验结果;
2. 使用Image J软件的细胞自动计数功能统计各平板菌落数,对比各组结果。